Manual de Coloracion de Papanicolaou y Montaje Manual

APOYO DIAGNOSTICO CITOCENTRO

COLORACION DE PAPANICOLAOU Y MONTAJE MANUAL CODIGO: ADx-C-M006 VERSION:02-2011 VERSION:02-2011

COLORACION DE PAPANICOLAOU Y MONTAJE MANUAL DE CITOLOGIAS

1. OBJETIVO Describir en forma detallada el proceso de coloración y montaje manual de citologías cérvico uterinas realizado en el Laboratorio Central de Citopatología como procedimiento alterno cuando se presentan fallas en la coloración y montaje automatizado de citologías cérvico uterinas. La coloración manual con Papanicolaou, está universalmente estandarizada para estudio de células exo y endocervicales, la coloración que permite detectar alteraciones tanto nucleares como citoplasmáticas. La coloración manual con Papanicolaou, fue creada para poner de manifiesto con mayor claridad, las anomalías de la cromatina a nivel de la cromatina (núcleo) logrando así determinar , acompañado de otras características, la presencia o ausencia de cambios de tipo displasia, atipìa, carcinoma, adenocarcinoma o lesiones degenerativas entre otras. Dicha coloración es específica por sus características tintoriales, para células exfoliadas de cuello uterino. 2. ALCANCE Este documento está dirigido a el grupo de auxiliares que que participan en el proceso proceso de coloración y montaje de citologías cérvico uterinas del Laboratorio Central de Citopatología y rige a partir de la la fecha de socialización. socialización.

3. MARCO DE REFERENCIA - MARCO M ARCO NORMATIVO MARCO NORMATIVO Resolución 1043 de 2006, por el cual se establecen los estándares mínimos de Habilitación. MARCO DE REFERENCIA Manual de Normas Técnico – Administrativas Para el Programa de Detección y Control del Cáncer de Cuello Uterino Secretaría Distrital de Salud, constituye una herramienta para mejorar la gestión de los diferentes actores del Sistema de seguridad social y cumplir con los objetivos propuestos, como la reducción de la mortalidad por cáncer invasor y el incremento de la detección temprana de esta patología.

Elaboró: Rosalba Vargas

Revisó: Vilma Lucia Herrera Ahumada

Validó: Fernando Anibal Peña Diaz

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Guía control de calidad para la toma, procesamiento é interpretación en muestras de citología de cuello uterino Instituto Nacional de Salud, que permite unificar los procedimientos en las instituciones prestadoras de servicios de salud, de manera que la calidad de la citología garantice su razón de ser, es decir la detección oportuna del cáncer de cuello uterino para iniciar el tratamiento adecuado. 4. REQUISITOS DEL ESPECIMEN: ESPECIMEN: La citología cérvico-uterina, debe estar estar adecuadamente fijada con citofijador o con alcohol al 95 %. 5. EQUIPO Recipientes plásticos de coloración con capacidad láminas. Resina mezclada con xilol para el montaje de las muestras

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6. REACTIVOS: REACTIVOS: a. b. c. d. e. f. g. h. i. j. k.

Alcohol al 96% Hematoxilina de Harris Alcohol amoniacal EA-50 Orange Xilol Laminas portaobjetos Cinta cobertora de lamina Laminillas cubreobjetos Vasos de Koplick Agua.

7. CONTROLES La preparación de reactivos (colorantes específicos) está a cargo del citotecnòlgo del laboratorio, quien periódicamente revisa y cambia el set de coloración. El proceso de coloración está a cargo de una auxiliar. Se debe dejar registro con fecha y hora de de cambio de coloración, especificando especificando si hubo algún problema definido o consistió en cambio periódico.




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8. PROCEDIMIENTO Para el proceso de coloración las láminas deben colocarse en en canastillas, teniendo la precaución que no golpeen la base de las cubetas durante el proceso, con el fin de evitar el desprendimiento de material celular. Al pasar de una cubeta a otra, la canastilla se seca por su base con una compresa. 1. Se colocan las láminas en una canastilla y se dejan en en agua por minutos.

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2. La canastilla se coloca dentro de los recipientes plásticos, los cuales están ubicados en serie siguiendo los siguientes pasos: a. b. c. d. e. f. g. h. i. j. k. l. m. n. o. p. q. r. s.

Alcohol al 96% por 15 a 20 minutos. Lavado con agua corriente por 2 minutos. Hematoxilina por 2 a 3 minutos. Lavado con agua corriente por 2 minutos. Agua amoniacal al 70% 3 inmersiones. Alcohol al 96% 10 inmersiones. Alcohol al 96% 10 inmersiones. Alcohol al 96% 10 inmersiones. Orange G por 3 a 5 minutos. Lavado con agua corriente corriente por 2 minutos. Alcohol al 96% 10 inmersiones. Alcohol al 96% 10 inmersiones. Alcohol al 96% 10 inmersiones. EA 50 2 por 3 minutos. Lavado con agua corriente por 2 minutos. Alcohol al 96% 10 inmersiones. Alcohol al 96% 10 inmersiones. Alcohol al 96% 10 inmersiones. Xilol por 4 minutos.

3. Se dejan secar las láminas al aire libre. 4. El montaje es la unión entre la lamina portaobjeto portaobjeto y la laminilla cubre objeto utilizando resina sintética, con el fin de obtener una muestra cubierta y protegida contra la oxidación del material celular; el montaje se realiza aplicando una pequeña cantidad de de resina que cubra completamente el el extendido de la lamina lamina portaobjeto, luego se coloca la laminilla cubreobjeto teniendo la precaución de evitar la formación de burbujas. Este procedimiento permite la formación de una película transparente que que facilita una adecuada visualización visualización celular.




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5. Se rotulan las láminas siguiendo el procedimiento procedimiento Rotulación y Distribución Distribución de citologías. 5. LIMPIEZA N/A 6. MANTENIMIENTO Buscando la optimización y el adecuado uso de la coloración, se recomienda tener en cuenta las siguientes indicaciones: Para mantener limpia la hematoxilina se puede optar por una de las siguientes alternativas: filtrar todos los días el colorante o retirar la capa metálica utilizando un papel absorbente antes de hincar la coloración. Los colorantes fuertes como la hematoxilina de HARRIS, el Orange G y el EA 50 se deben filtrar cada semana, agregando cuanto haga falta para completar el volumen de cada cubeta. En el Laboratorio Central de Citopatología la cada 1000 láminas coloreadas se debe cambiar la coloración. Todos los alcoholes y colorantes deben utilizarse dentro de su fecha de vencimiento y son almacenados siguiendo las especificaciones del fabricante. Las cubetas que contienen los colorantes deben estar rotuladas, permanecer tapadas y con el volumen suficiente para cubrir la totalidad de la canastilla con las láminas. 7. SEGURIDAD Se observan todas las medidas universales de bioseguridad en el manejo de muestras biológicas y químicamente peligrosas.

8. COMENTARIOS Y OBSERVACIONES La coloración permite variar algunos de los tiempos establecidos, en busca del lograr el contraste ideal, siempre y cuando sea autorizado por el médico patólogo.

9. ANEXOS - Formato Registro Registro de de Cambio y Filtro de Coloración de Citología Citología (ADx-C-F022)




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Este manual fue leído y socializado por las siguientes personas:

FUNCIONARIO

Rosalba Vargas

____________________ ____________________ Firma

Auxiliar de laboratorio Cargo

Jenny González

____________________ ____________________ Firma


Deyanira Sánchez ____________________ ____________________ Firma





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